一、采血时机

　　1、尽可能在抗菌药物使用前;

　　2、对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集;

　　3、寒战和发热初起时采血可提高阳性率;

　　4、怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过39才抽血。

　　二、采集方法

　　1、手卫生：洗手或手消毒，最容易忽略，却也是很重要的一条;

　　2、准备血培养瓶：根据检验申请单，选择合适的血培养瓶，检查血培养瓶有无破损、保质期，用75%酒精消毒血培养瓶塞，作用60s，待干。在血液注入血培养瓶之前，用无菌纱布或棉签清除橡皮塞残留的酒精;

　　3、皮肤消毒：按常规消毒穿刺部位皮肤，使用消毒剂[碘酊或聚维酮碘(碘伏)]对皮肤进行严格仔细的消毒处理，消毒范围为8×10cm，待干，防止皮肤寄生菌或环境引起的`污染。

　　4、持采血针按常规方法刺入静脉，另一头刺入相应血培养瓶内，利用瓶内真空抽取血标本，如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。(使用采血针采血时应先采集需氧瓶后采集厌氧瓶，使用注射器采集标本时则反之)

　　5、建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶，有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。如果不能满足推荐的采血量时，应首先满足需氧瓶;婴幼儿血培养一般只抽一瓶需氧瓶进行培养，无需常规做厌氧瓶。

　　6、血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。

　　三、标本运送

　　1、已采集的标本应视为潜在性生物危险品，均应置于防漏、防渗、相对密封的容器中收集、存储与转运。

　　2、血培养采样结束后应由专人立即送至微生物实验室核收，一般不得超过2小时;如因某种原因不能及时送检，应将已采集好的血液培养瓶放在室温，切勿放入冰箱内冷藏或冷冻。

　　四、注意事项

　　1、标本采集和运送均应在防止污染的原则下认真进行。

　　2、不应从留置静脉或动脉导管处抽血，因为导管易被固有菌群污染。

　　3、为获得准确结果，需要多套血培养。成人应至少“双抽四瓶”，即至少在2个穿刺点抽取2套血培养，每套分别放入需氧和厌氧瓶中，每瓶8~10ml，并标明“左侧”或“右侧”采血点，可有效增加血培养阳性率。

　　.4、当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时，在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养，两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟)，各自做好标记。

　　5、对不明原因的发热、亚急性心内膜炎，由三个不同的部位抽取3套血培养，每套间隔时间≥1小时，当培养24～48h后若为阴性，则继续采集2套血培养。

　　6、导管相关血流感染(CR-BSI)：

　　(1)希望保留深静脉导管者

　　至少2套血培养，其中至少一套来自外周静脉，另一套从导管采集，两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟)，并各自做好标记。

　　(2)决定拔除深静脉导管者

　　从独立的2个外周静脉部位，无菌采集2套血培养，同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室(实验室采用Maki 半定量平板滚动培养)。

　　拓展阅读：

　　血培养标本采集方法

　　1. 采血指征：

　　可疑感染患者出现以下任一指征时,可考虑采集血培养：

　　1）体温>38℃或<36℃.

　　2）寒战.

　　3）外周血白细胞计数增多(计数>10.0×109/L,特别有“核左移”时)或减少(计数<4.0×109/L).

　　4）呼吸频率>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32mmHg.

　　5）心率>90次/min.

　　6）皮肤黏膜出血.

　　7）昏迷.

　　8）多器官功能障碍.

　　9）血压降低.

　　10）炎症反应参数如C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-3-D葡聚糖(G试验)升高等。

　　2.采血时间：

　　寒战或发热初起时采集，抗菌药物应用之前采集最佳。

　　3、采集套数:

　　一套血培养是从同一穿刺点采集的血液标本，通常分别注入需氧和厌氧瓶。成人每次应采集2套-3套,每套从不同穿刺点进行采集,2d-5d内无需重复采集。如怀疑感染性心内膜炎,应重复采集多套。儿童通常仅采集需氧瓶。有以下高危因素时应考虑厌氧瓶培养：其母产褥期患腹膜炎,或慢性口腔炎或鼻窦炎、蜂窝组织炎、有腹腔感染的症状和体症、咬伤、接受类固醇治疗的粒细胞缺乏患儿。考虑肺炎链球菌菌血症时,宜同时做脑脊液培养。

　　全自动血培养瓶

　　4.采血量：

　　成人每瓶采血量8mL-10mL，或按照说明书采集；婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%,具体采血量参考说明书。若采血量充足，注射器采集的血液先注入厌氧瓶，后注入需氧瓶，碟形针采集的血液反之。若采血量不足,优先注入需氧瓶。儿童患者因为血液中病原菌浓度较高，血培养量无需等同于成人。实验室会依照血培养瓶厂家的建议，采集足够的血液标本进行化验，护理人员要保证血液的量。

　　5.采集方法：

　　1）采集静脉血：仅在评估导管相关性血流感染时采集导管血。血培养宜单独采血，与其他检测项目同时采血，应先接种血培养瓶，以避免污染；

　　2）采集前做好手卫生：静脉穿刺点选定后，去除血培养瓶的塑料瓶帽，切勿打开金属封口环和胶塞，使用75%乙醇或70%异丙醇消毒，自然干燥60s。注意采血前检查血培养瓶是否完好无损、是否过期；

　　3）在穿刺前或穿刺期间：为防止静脉滑动，应戴无菌乳胶手套固定静脉；采集部位：推荐从外周静脉采集血液标本 ,应选择比较大的静脉如肘正中静脉或股静脉，不建议采集动脉血，因其诊断价值不大 ，同时因静脉留置导管采血常伴有高污染率 ，应避免从静脉留置导管采血。若医嘱需从导管处采血 ，应从外周静脉另外再采取一套血培养 ，加以帮助阳性结果判断。

　　4）穿刺点皮肤消毒：

　　a) 三步法：

　　① 75%乙醇擦拭静脉穿刺部位，待干30s以上。

　　② 1%-2%碘酊作用30s或1%碘伏作用60s，从穿刺点向外消毒，消毒区域直径达3cm以上。

　　③ 75%乙醇擦拭碘酊或碘伏消毒过的区域进行脱碘，对碘过敏的患者，在第一步基础上再用用75%乙醇消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。

　　b)一步法：

　　0.5%葡萄糖酸洗必泰作用30s(不适用于2个月以内的新生儿)，或70%异丙醇消毒后自然干燥(适用于2个月以内的新生儿)。

　　注:其他消毒剂需要进行消毒能力和适用性验证后オ可使用。

　　5） 用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头(如行第二次穿刺,换针头),沿壁注入血培养瓶,不应将抗凝血注入血培养瓶。

　　6）血液接种到培养瓶后,轻轻颠倒混匀以防血液凝固。

　　7）完成工作后洗手。

　　6.血培养运送：

　　血培养瓶应在2h之内送至实验室孵育或上机；如不能及时送检,应将血培养瓶置于室温下，切勿冷藏或冷冻。

　　临床护理人员需要正确掌握血培养标本采集的方法，才能保证标本检测的准确性，提高阳性率，指导临床合理用药，提高治疗效果。

检验标本采集主要注意事项

　　各种检验标本的采集合适与否，直接关系检验质量，临床和检验科都应给予高度重视。下面是我为大家带来的关于检验标本采集的主要注意事项的知识，欢迎阅读。

　　1 血液标本

　　不仅取血部位、时间、方法对血细胞计数有影响，有些治疗药物也影响血细胞计数的结果。采血用试管分普通管、抗凝管两大类;抗凝管又根据管内抗凝剂的不同分为草酸钾管、草酸钠管、枸橼酸钠管、乙二胺四乙酸二钾盐或二钠盐(EDTA-K2或DETA-Na2)管和肝素管等。

　　1.1 草酸钾 与钙离子结合成草酸钙，使血液抗凝，常用量为1～2g/L血液。

　　1.2 草酸钾氟化钠混合抗凝剂 专供葡萄糖测定用。

　　1.3 枸橼酸钠 用于血沉及血凝检查。

　　1.4 肝素 是一种黏多糖体，可抑制凝血酶原转化为凝血酶，使纤维蛋白原不能转化为纤维蛋白，以(15±2.5)IU抗凝1ml血。可用于生化和血液学检验标本，但不可用于筛选弥散性血管内凝血的血浆鱼精蛋白副凝试验(3P)和凝血酶试验。因肝素可与鱼精蛋白作用发生沉淀，使3P出现假阳性以及肝素的抗凝血酶作用出现严重干扰。

　　1.5 乙二胺四乙酸(EDTA) 能与钙离子络合而抗凝，通常血常规中用钾盐EDTA-K2或EDTA-K3。

　　2 尿液标本

　　送检的尿液标本尽可能留早晨第一次尿，因第一次晨尿较恒定，不受药物、饮食等因素的影响。留尿标本要求女性患者冲洗外阴后留中段尿，男性患者要避免液、前列腺液等污染。标本留取后及时送检，以免标本中成分分解。

　　根据标本采集时间可将标本分为晨尿、随意尿、空腹尿、计时尿(2h、3h、12h、24h等)、午后尿、餐后尿等。随时尿不受时间的约束，多为门诊病人的留尿方法。空腹尿为进餐后4h左右排尿，收集下一次的尿液供检验，主要用于了解葡萄糖代谢情况。计时尿不论几小时，均应于计时开始排空尿液，然后于规定时间内排尿，计时尿多用于肾功能和有形成分排出率的评估，亦用于计算淀粉酶或肌酐的排出率。24h尿多用于化学组分的测定，亦用于泌尿道抗酸杆菌的检查。尿液原则上不用防腐剂为好，如需12h或24h尿，首选以冷藏为妥，次为根据检验申请加上合适的防腐剂。作胆红素和尿胆元检查的尿标本应避免日光照射。

　　尿液细菌培养标本采集和保存：标本需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药物5天之后留取尿液标本;尿液在膀胱内应停留6～8小时以上，使细菌有足够的时间繁殖。尿液标本收集通常采用清洁排尿法，须以肥皂和清水洗净尿道口，排泄出的尿液前段需弃去，收集中段或近后段的尿液装于无菌的容器内。以无菌导管收集尿液(特别是女性患者)的方法，若非必要应尽量避免，因其易引发尿道感染。

　　不能立即检查的标本应适当采用冷藏或防腐保存，温度4～8℃，最好不要超过6小时。

　　3 粪便标本的采集

　　粪便标本应在发病早期并且尽量在用抗菌药物治疗前采集，直接装入无菌容器内，避免混入尿液等污染。标本留取后也应立即送检，避免其中的成分破坏或分解。放置过久易导致细胞的破坏，特别是阿米巴原虫等。如做阿米巴原虫检查还应保持一定温度，且立即送检，立即检查。一般说来，粪便中含有黏液的部分，最适合作微生物检查。如大便上有黏液或是血液，应采集此处标本，以提高阳性率。如检查虫体或绦虫头节，应全部粪便送检，检查蛲虫卵应用拭子于清晨排便在肛门周围取标本送检。粪便标本不应污染容器外表，且不能装太满，30g容器以装5～10g为妥。

　　4 痰液标本

　　采集痰液标本的时间一般以清晨为好。多数病人清晨痰量较多，即使对咳痰量较少的病人，也是晨痰最易采集。采早晨第1口痰，多用于细胞学及微生物学检查。采样前须用牙膏刷净牙齿，用清水漱口3次，将口腔内的唾液吐出，用力咳出气管深处的第一口痰，吐入无菌容器内。咳痰较困难者可用雾化蒸气吸入以利痰液咳出。小儿患者，可轻压胸骨柄上方以诱导咳痰，也可用气管穿刺吸取等方法采集。气管下采集法：通常用于在给患者行纤维支气管镜时顺便抽取;气管穿刺法：多仅用于昏迷患者，由临床医师进行。

　　微生物培养取样应在抗菌药物等治疗开始之前，如已用药，则应选血药浓度最低时采样。标本采集后应立即送检。如不能立即进行检查则应暂时放于4℃冰箱中，存放的标本应在24小时内检查。

　　5 脓汁及创伤感染分泌物标本的`采集

　　5.1 封闭式脓肿 在患者病灶局部的皮肤或黏膜表面先用碘酒消毒，再用75%酒精脱碘，以无菌干燥注射器穿刺抽取，将采集的脓汁注入无菌试管中。

　　5.2 开放性脓肿和脓汁分泌物 在患处附近的皮肤或黏膜用无菌纱布或棉布擦拭，供培养用的标本尽可能从深部流出，如为瘘管可在无菌操作下取组织碎片。

　　6 生殖道标本的采集

　　6.1 男性标本 精和前列腺液：都要求标本采集后立即送检，采集精应在3～5天内勿排精，且于排精后30分钟内保温送达检验科，容器以广口小玻璃瓶为好，不可贮于避孕套或塑料瓶内。前列腺液由医师做前列腺按摩术取样。如疑为急性淋病奈瑟菌或其他化脓性细菌感染应在清洗头部后，以碘伏或其他非黏膜刺激性消毒剂消毒后，挤出分泌物立即以无菌棉拭子采取，立即送检。如疑为前列腺炎、精囊炎或慢性淋病奈瑟菌感染应由医师按摩前列腺，以无菌操作自尿道口采取前列腺液送检。

　　6.2 女性标本 阴道分泌物：由妇产科医师采样后送检，如成批送检应在37℃加温数分钟后检查，否则影响滴虫动力，容易漏检。成年妇女自宫颈采取标本，应在扩阴器的支持下选取有炎症或分泌物部位，先以无菌棉拭子拭去浅表层分泌物，再用另一拭子取分泌物送检。如未成年幼女疑患性传播疾病时，不应使用扩阴器，应以无菌棉拭子在阴道口处采取分泌物送检。

　　7 脑脊液、浆膜腔液、关节液

　　均由临床医师穿刺采样，检验科应提供专用的各种试管或容器，相互配合并及时检验。

　　8 骨髓

　　标本由临床医师行骨髓穿刺取得，为使涂片满意，必要时由检验科协助做骨髓涂片。

　　9 胃及十二指肠液

　　一般均在门诊室或病房采集后送检，收样时应对标本进行核对。胃液分析有基础酸排量(BAO)和最大胃酸排量(MAO)测定等。十二指肠液一般用引流术留取，分D、A、B、C 4 管，D管为十二指肠液，A(甲)管为胆总管液呈橙黄色，B(乙)管为胆汁呈黄绿色，C(丙)管为肝胆管液呈柠檬色，细菌培养应从乙管取样接种培养。

　　10 其他标本

　　根据具体检验项目而定。

　　其实，不仅医生要精晓以上知识，患者若对标本采集的相关事项也能够加深了解，积极配合采集过程，就更有助于得到最准确的检验结果。

化验血液标本采集注意事项

　　化验血液标本采集注意事项有哪些你知道吗?你对化验血液标本采集注意事项了解吗?下面是我为大家带来的化验血液标本采集注意事项的知识，欢迎阅读。

　　标本采集的原则

　　(一)按医嘱采集标本 按医嘱采集各种标本，由医生填写检验申请单，要求目的明确、字迹清楚，并签全名。

　　(二)作好采集前准备

　　1.采集标本前，应明确检验项目、检验目的，选择采集的方法，确定采集标本的量，了解注意事项。

　　2.根据检验目的，选择适当的.标本容器，并在容器外贴上标签，标明科别、病室、床号、姓名、住院号、检验目的、送检日期等。

　　3.采集标本前应仔细查对医嘱，核对检验申请单，核对病人，以防发生差错。

　　4.作好解释，向病人说明检验目的及注意事项，以消除顾虑，取得病人配合。

　　(三)确保标本质量

　　1.要确保标本质量，必须掌握正确的采集方法，及时采集，采集的量要准确。如作妊娠试验要留晨尿，因为晨尿内绒毛膜促性腺激素的含量高，容易获得阳性检验结果。

　　2.标本采集后，应及时送检，不应放置过久，以免影响检验结果，特殊标本还应注明采集时间。

　　(四)培养标本的采集

　　采集细菌培养标本应在病人使用抗生素之前，如已经用药，应在血药浓度最低时采集，并在检验单上注明。采集时严格执行无菌操作，标本应放入无菌容器内，且容器无裂缝，瓶塞干燥，不可混入防腐剂、消毒剂或药物，培养液应足量，无混浊、变质，以免影响检验结果的准确。

　　静脉血标本采集法

　　1.静脉血标本的种类(此处有常考点)

　　(1)全血标本用于测定血液中某些物质的含量，如血糖、血氨、尿素氮等。

　　(2)血清标本用于测定血清酶、脂类、电解质、肝功能等。

　　(3)血培养标本用于查找血液中的病原菌。

　　2.采集静脉血标本的方法

　　(1)用物备齐。

　　(2)操作方法

　　1)护士核对医嘱，备齐用物，贴好标签，注明科别、病室、床号、姓名、住院号、检验目的、送检日期等。

　　2)备齐用物，携至床旁，核对病人，说明抽血目的及配合方法，以取得病人合作。

　　3)协助病人取舒适体位，选择合适静脉，垫小垫枕，扎紧止血带，消毒皮肤，嘱病人握拳，再次查对。

　　4)按静脉注射法穿刺，见回血后，固定好针头，抽动活塞取所需血量。

　　5)松开止血带，嘱病人松拳，迅速拔针，用无菌干棉签按压至不出血。

　　6)回抽注射器活塞，以防血液凝固造成针头阻塞、注射器粘连。

　　7)将血液分别注入标本容器(此处有常考点)

　　①血培养标本：

　　a.注入密封瓶：去除铝盖中心部分，常规消毒瓶盖，更换无菌针头，将抽出的血液注入瓶内，轻轻摇匀。

　　b.注入三角烧瓶：瓶口以棉塞及纱布严密包封;使用时，先将封瓶纱布松开，取出棉塞，并迅速在酒精灯火焰上消毒瓶口，取下针头，将血液注入瓶内，轻轻摇匀，再将棉塞和瓶口经火焰消毒后盖好，扎紧封瓶纱布。

　　c.取血量：一般血培养取血5ml;亚急性细菌性心内膜炎病人，应取血10～15ml，以提高细菌培养阳性率。

　　②全血标本：立即取下针头，将血液沿管壁缓慢注入盛有抗凝剂的试管内，并轻轻摇动，以使血液和抗凝剂混合。

　　③血清标本：立即取下针头，将血液沿管壁缓慢注入干燥试管内，勿将泡沫注入，并避免震荡，以防红细胞破裂溶血而直接影响检验结果的准确性。

　　8)再次查对，安置病人，整理床单位，清理用物，洗手。

　　9)将标本连同检验单及时送检。

　　(3)注意事项(话说，注意事项一定要注意呀)

　　1)如需空腹抽血，应提前通知病人禁食，以避免因进食而影响检验结果。

　　2)根据检验目的的不同，选择标本容器，并计算所需的采血量。

　　3)取血后，应回抽注射器活塞，以防血液凝固造成针头阻塞、注射器粘连。

　　4)如同时抽取几个种类的血标本，应注意注入顺序：一般先将血液注入血培养瓶，再注入抗凝管，最后注入干燥管，动作应准确迅速。

　　5)采集血培养标本，应严格执行无菌操作，防止污染;培养液的种类及量应符合要求，瓶塞保持干燥。

　　6)血标本严禁在输液、输血的针头处或同侧肢体抽取，应在对侧肢体采集血标本。

采集时应注意的事项：1.确定采集时间和地点：根据昆虫的生态学特性而定，如小麦吸浆虫的成虫只有在小麦抽穗、扬花时才能采到，大豆食心虫的越冬幼虫及虫茧只有在土中才能采到；蜻蜓、蜂类等需在白天采集，蛾类等一般在夜间采集，等等。

2.个体完整、类型齐全：采集的标本应力求完整无损，以利于鉴定和保存；每一种个体应采集足够多的数量尤其是稀有种类；每种昆虫应尽可能采到各个虫态类型及雌、雄个体，有的还需采集多型现象的各型。

3.注意采集害虫的为害状以辅助鉴定：有些检疫性害虫的为害状或隐藏部分不便切取，可拍摄照片记录。

4.及时做好采集记录：标本应分类编号，记明采集时间、采集地点、采集人、寄主及环境状况等。寄主还应尽量记录品种、产地、路径地段、运输工具、包装材料及采集部位。有些颜色、环境状况难以记录的，最好现场拍摄彩色照片。